提高精子活性的方法

2024-06-25

提高精子活性的方法（共8篇）

篇1：提高精子活性的方法

一、立即抛弃香烟。每天吸烟一包以上的男人，精子活力总是比不吸烟者的精子弱。但在戒烟后，应特别注意不要焦躁，因为那会使睾丸激素下降，从而造成精子减少。

二、夜间起来排尿是一种好习惯，因为它会对精子的产生有好处。

三、含有维生素E和各种微量元素的水果、蔬菜有抵御破坏精子的病菌的作用。因此，应多吃含有维生素E和微量元素的食物。每天增加600毫克维生素E可以提高精子的活力。

四、穿宽大的棉织内裤比“Y”字形尼龙内裤好，这样可以使阴囊免受干扰，有利于精子生成。要避免洗热水澡。一天坐着开车不要超过3小时，因为睾丸贴着身体时间过长，会使温度升高，影响精子的生成。

五、如果不小心染上性病，必然会对精子的数量产生不良影响。如果发现生殖器有异常情况，要定期请医生检查。

六、跑步要适量不要过于激烈，激烈的跑步运动会降低精子活力，因此跑步要适量，不要过于激烈。

篇2：提高精子活性的方法

绿色蔬菜中含有维生素C、维生素E、锌、硒等利于精子成长的成分。平常的饮食中不能总是大鱼大肉的，每天要吃一到两盘蔬菜才行。比如山药、小白菜、菠菜等。蔬菜尽量选择无机的、自然成长的比较好。比如菠菜，小编喜欢购买生长的麦子地里的，天然没有化学肥料。

多吃坚果类食物。

坚果中富含欧米茄三脂肪酸，也应多吃，利于精子细胞成长。像花生、核桃、开心果、杏仁等都不错，每天只需一小把就可以。

多吃白肉少吃红肉。

白肉指鸡肉、鱼肉等海鲜类，含蛋白质高，胆固醇及饱和脂肪酸少;红肉指猪肉、牛肉、羊肉，含胆固醇及饱和脂肪酸高。相比而言，前者对男性精子的质量有更多的帮助。

注意锌的补充。

想提升精子质量，要多补充动物性的食物，这类食物含锌一般比植物性的食物为多。含锌较多的食物有：瘦肉、肝、蛋、奶制品、可可、莲子、花生、芝麻、胡桃、紫菜、海带、虾、海鱼、红小豆、荔枝、栗子、瓜子、杏仁、芹菜、柿子等。宜多食粗面粉、豆腐等大豆制品、牛肉、羊肉、鱼、瘦肉、花生、芝麻、奶制品。

戒烟少酒。

大家都知道，烟里面的尼古丁和酒精都对精子有伤害，但是总是戒不了，但是为了提升精子质量，必须要戒烟，酒可以适当喝一些啤酒，但不能过多，更不能酗酒，否则对精子有损害。除了避免抽烟，还要躲开二手烟的侵袭。

远离汽车尾气。

平常要尽量远离汽车的尾气，特别是柴油车的尾气，尾气中含有的二恶英是极强的环境内分泌干扰物质，可以使男性的睾丸形态发生改变、精子数量减少、生精能力降低。因此平常出门要戴好口罩，尽量远离柴油车。

减少噪音和辐射污染。

噪音会使人体内分泌紊乱，导致精液和精子异常。长时间的噪音污染可以引起男性出现问题;而大剂量的辐射可引起睾丸组织结构的改变，增加精子的畸形率，降低精子数量、精子密度等重要指标。因此想提升精子质量，就要远离噪音过大的环境，避免长时间玩电脑、使用电磁炉、微波炉等，手机要放到上衣口袋，不要放在裤兜里，以降低辐射影响。

同房次数。

篇3：提高精子活性的方法

乳酸脱氢酶( lactate dehydrogenase,LDH) 是一种糖酵解酶,是体内能量代谢过程中一个重要的酶类, 它以氧化型辅酶 Ⅰ ( nicotinamide adenine dinue- leofide,NAD + ) 为辅酶,是最早发现的同工酶。自1959年Markert首次发现LDH具有多种分子形式的同工酶以后,人们对该酶的研究不断深入。精子中LDH主要集中于中后部的线粒体鞘上,通过呼吸作用给精子提供能量［4］。因此,LDH与精子运动及存活的供能过程有密切关系。

目前,有关LDH的研究主要集中在家蚕、鱼类以及人类中,而在家畜尤其是绵羊精子中关于LDH活性的研究还鲜有报道。试验采用酶动力学分光光度法通过检测超低温冷冻保存前后小尾寒羊精子内LDH活性的变化探讨冷冻保存对精子LDH活性的影响及与精子活率的关系,以期为提高绵羊精子冷冻保存效果和正确评估精子质量提供理论参考。

1材料

1. 1主要试剂

甘油、D - ( + ) - 葡萄糖、蔗糖、青霉素、链霉素,美国Sigma公司生产; 柠檬酸钠、氯化钠、纯乙酸、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠、0. 2% Triton X - 100、Grace’s medium,均为国产分析纯。

1. 2主要仪器

高速离心机( 型号为ZONKIA) ,浙江中佳公司生产; 紫外可见分光光度计( 型号为HC - 2518、TU - 1810 PC / SPC) ,普析通用公司生产; 显微镜( 型号为CKX31) ,OLYMPUS公司生产。

2方法

2. 1稀释液的配制

基础液的成分和剂量,见表1。煮沸消毒后置于4 ℃ 冰箱保存。使用前取基础液80 m L,加20 m L新鲜卵黄,青霉素、链霉素各10万单位配制成保存稀释液; 再取上清液94 m L加甘油6 m L,配制成冷冻稀释液。

取Na H2PO40. 062 3 g,Na2HPO40. 414 g,用少量的超纯水溶解后定容至20 m L,用酸度计测量,配制成p H值约为7. 4,浓度为0. 1 mol/L的磷酸盐缓冲液。

取丙酮酸钠0. 029 7 g,加入15 m L超纯水,配制成18 mmol/L丙酮酸钠。

取还原型辅酶Ⅰ( NADH) 0. 057 5 g,加入15 m L超纯水,配制成5. 4 mmol/L NADH溶液。0. 1 mol/L磷酸盐缓冲液配制,临用前现配,置于棕色瓶中4 ℃ 保存。

2. 2精液的采集与常规品质的评定

选取膘情中等、体质健康、性欲旺盛的同一只小尾寒羊种公羊,采用常规采精方法采集精液。采出精液后立即在37 ℃ 条件下进行常规品质评定,要求原精液密度达到密级,活率在0. 8以上,无异常气味,色泽乳白用于试验。

2. 3精液的冷冻保存与解冻

2. 3. 1精液的稀释与平衡精液经常规检查后,将符合要求的新鲜精液根据活率和密度按3 ~ 6的比例,在35 ℃条件下用冷冻稀释液进行等温稀释,混匀后在室温条件下用0. 25 m L的塑料细管进行分装并封口。裹8 ~ 10层纱布置于4 ℃冰箱中平衡2 ~ 3 h。

2. 3. 2精液的冷冻与保存将平衡好的精液细管置于自制冷冻漂浮器上( 距离液氮表面2. 0 ~ 2. 5 cm, 温度在 - 80 ~ - 110 ℃ 之间) 熏蒸10 min,投入液氮中保存。

2. 3. 3精液解冻从液氮罐中取出精液细管,迅速浸入39 ~ 40 ℃ 水浴中,轻轻摇动直至融化10 ~ 15 s。

2. 4精子活率的评定

将稀释精液摇匀后,取中层精液10 μL,滴于37 ℃ 恒温板上等温预热的载玻片上,盖片后置于配有37 ℃ 恒温台的显微镜下放大400倍检查精子1 000个以上,分别计算呈直线运动的精子数和精子总数,计算精子活率。

2. 5 LDH活性的测定

2. 5. 1 LDH提取精液总LDH粗提液: 取稀释的精液120 μL置于离心管中,加入0. 2% Triton X - 100 360 μL抽提20 min,然后在4 000 r / min条件下离心30 min,保留上清液,待测。

精清中LDH粗提液: 取稀释的精液120 μL置于离心管中,加入360 μL自制稀释液在2 000 r/min条件下离心20 min,保留上清液,待测。

精子中LDH粗提液: 上一步所得沉淀加入0. 2% Triton X - 100 360 μL抽提20 min,然后在4 000 r / min条件下离心30 min,保留上清液,待测。

2. 5. 2 LDH活力的测定采用酶动力学分光光度法测定LDH活性。反应体系: 0. 1 mol/L磷酸盐缓冲液( p H值为7. 4) 2. 78 m L,18 mmol/L丙酮酸钠0. 1 m L,5. 4 mmol / L NADH 0. 1 m L。该混合液在25 ℃ 水浴保温后转至比色皿中,在25 ℃ 条件下测定光密度值。测定时加入20 μL精子或精浆样品,迅速颠倒数次混匀,以缓冲液为空白对照记录340 nm处的光密度改变。每隔0. 5 min或1 min记录1次,共计6次,计算每分钟光密度改变,即△OD340 / min( 见表2) 。

m L

2. 6计算

计算公式推导如下: NADH在340 nm波长处的物质的量的消光系数为6. 22 × 1 000( 1 cm光径) , OD340 / min/ ( 6. 22 × 1 000) 即为反应液物质的量的每分钟变化速率,该值乘以l 000 000为微物质的量的浓度变化速度,再乘以反应体积0. 003 L则为底物( 或产物) 的1 μmol变化率。采用毫国际单位,酶活力计算公式为: 酶活力( m U/m L) = △OD340 / min/6. 22 × 3 000 × 样品稀释倍数。

2. 7数据的统计分析

试验数据相关性分析采用SPSS 10. 0统计软件包,差异显著性分析采用Excel软件中数据分析工具库进行描述统计、t检验和方差分析。试验重复5次以上。

3结果与分析

采用酶动力学分光光度法对精液、精子及精浆中LDH活性进行检测,结果表明,冷冻保存后绵羊精液总LDH活性[( 18. 40 ± 7. 85) U/m L]和精子LDH活性[( 5. 91 ± 2. 16 ) U/m L]与冷冻前[( 24. 89 ± 8. 21) U / m L、( 10. 80 ± 4. 95) U / m L]相比极显著降低( P < 0. 01) ,而精浆中LDH活性则极显著升高( P < 0. 01) ,表明冷冻保存对绵羊精液LDH活性造成严重影响。冷冻前后精子活率与LDH活性均呈极显著正相关( P <0. 01) ,表明LDH活性的高低与精子活率密切相关,可以作为绵羊精液品质评价的新指标。因此, 对冻融精子LDH活性的检测具有重要意义,见表3。

4讨论

LDH存在于哺乳动物发育成熟的睾丸和精子细胞中,与精子的生成代谢、获能和受精有密切关系,是精子能量代谢的一个关键酶。瞿桂玉等［5］研究表明,LDH可以作为衡量猪精液品质的一个指标,并且能够反映经稀释液处理体外保存后精子的活力情况。而LDH活性高低的变化与1次输精受胎率的变化趋势相一致,也就是说LDH可以反映公猪的繁殖力情况。邓顺美等［6］测定不育症精子LDH研究表明,测定精子LDH活性比单纯测定精浆LDH的活性更能反映精液的质量。说明酶活力的大小确切反映了精子的完整性和能育性,通过这些酶活力的测定就能准确地评定精液的质量。

注: 同列数据肩标大写字母不同表示差异极显著( P < 0. 01) ; 同列数据肩标**表示差异极显著( P < 0. 01) 。

试验通过酶动力学分光光度法建立了绵羊精液LDH检测方法,该方法采用紫外分光光度计,利用物质的分子或离子对某一波长范围的光的吸收作用,对物质进行定量、定性及结构的分析,所依据的光谱是分子或离子吸收入射光中特定波长的光而产生的吸收光谱。测定LDH活力,在基质液含丙酮酸钠及NADH中添加一定量的LDH提取液,观察NADH在反应过程中340 nm处光吸收值的减少,减少越多则LDH活力越高。

试验结果表明,冷冻后精浆LDH活性与冷冻前相比有极显著升高( P < 0. 01) ,而精子所含的LDH活性在冷冻后极显著降低( P < 0. 01) 。说明冷冻保存对精子的结构与功能造成了损伤,这可能是由于: 1) 精子在冷冻、解冻过程中因冰晶的形成与消失对精子造成机械性损伤,精子膜中的类脂蛋白从细胞的结构中分离开来,使细胞膜原有的空间构象发生改变,此时位于精细胞上的酶释放到精浆中,因此精子中的酶活性下降、精浆中的酶活性上升,导致精子受精能力下降［7］。2) 精液经过冷冻保存后精子线粒体受到损害,尾部中段产生空穴,使得轴丝和线粒体鞘突变,导致线粒体上酶被破坏,精子LDH活性降低［8］。此外,精液总LDH活性与冷冻前相比极显著降低( P < 0. 01) ,表明冷冻保存过程对LDH活性造成严重损伤。

试验结果还表明,冷冻前后精子活率与LDH的活性均有较好的线性关系,且两者均为极显著正相关( P < 0. 01) ,即LDH活性越高,精子活率越高。表明LDH活性与精子活率密切相关,可以作为绵羊精液质量评估的可靠指标。这与林金杏等［9］和瞿桂玉等［10］的研究结果相一致。试验采用的酶动力学分光光度法具有快速、易操作、周期短、干扰少等优点,值得推广。

参考文献

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[2]RITAR A J,SALAMON S.Fertility of fresh and frozen thawed semen of the Angora goat[J].Aust J Biol Sci,1983,36(1):49-59.

[3]MAXWELL W M,SALAMON S.Liquid storage of ram semen:a review[J].Reprod Fertil Dev,1993,5(6):613-638.

[4]陈田飞,吴大洋,李春峰.冷冻保存对家蚕精液乳酸脱氢酶活性的影响[J].西南农业大学学报:自然科学版,2004,26(6):764-768.

[5]瞿桂玉,徐震,彭海洪.不同稀释液对体外保存猪精液酶活力的影响[J].黑龙江动物繁殖,1997,5(4):10-11.

[6]邓顺美,李叔庚,文建国,等.不育症精子乳酸脱氢酶同功酶LDHx活性测定及其定位研究[J].中国组织化学与细胞化学杂志,2001,10(1):8-13.

[7]黄晓荣,章龙珍,庄平,等.超低温冷冻对日本鳗鲡精子酶活性的影响[J].海洋渔业,2008,30(4):297-302.

[8]贺庆华,林亚秋.乳酸脱氢酶C与哺乳动物精子能量代谢[J].安徽农业科学,2008,36(3):1076-1077.

[9]林金杏,阎萍,郭宪,等.冷冻保存对野牦牛精子酶活性的影响[J].中国草食动物,2007(2):10-13.

篇4：锻炼大脑提高灵活性的方法

不懒惰多动脑。

要想训练大脑面对问题更加快速灵活一定要与懒惰绝缘。一旦懒惰就会放弃思考，那么久而久之，长期不用脑，就会让大脑的反应能力没有那么灵敏，所以，要学会多用脑，多动脑，坚决不能让懒惰有可乘之机。

多玩脑筋急转弯。

要想训练大脑使之快速灵活可以多玩玩脑筋急转弯的游戏。脑筋急转弯能够让思维更加活跃，让大脑飞速运转，越用越灵活。所以，在闲暇之时不妨三五好友一起来玩玩脑筋急转弯，让大脑得到锻炼的同时也带来不少乐趣。

多做做数学题。

多做数学题是脑部训练中很积极的方式。因为数学是逻辑性思维，需要动脑思考，只有动脑积极寻求解题之道，才能让难题迎刃而解。因此，多做数学题能有助于多动脑，只有多动脑了才能达到大脑训练的目的，才能让其面对问题时可以更加快速灵活。

多参加知识竞赛。

参加知识竞赛是训练大脑反应能力的有效途径。知识竞赛不仅让你丰富地掌握了各种知识，增长了见识，充分发挥了大脑的记忆功能，更重要的是它能有效地训练大脑的反应能力，在抢答的时候稳操胜券。成为最终制胜的法宝。所以，多参加知识竞赛能经常训练大脑的反应速度，让大脑面对问题时更加快速灵活。

多玩益智类玩具。

玩具不仅仅是小朋友的专属。现在许多成年人也可以玩些益智的玩具，在增加成就感的同时也会对大脑的训练起到正面且积极的作用。那么哪些益智型玩具适合成年人玩呢?比如魔方、拼图都是成年人可以玩的玩具，它们的好处是让手与脑并用，来促进思维，使头脑更加灵活。

遇到棘手的事情多思考，自己解决。

篇5：提高老年人大脑活性的方法

记忆力是帮助我们大脑年轻的重要途径之一。有意识地回忆自己看过的图片上的信息，帮助自己做记忆体操。

多做脑力工作

为保持大脑年轻，应该经常做一些脑力工作，如做数学题、写文章，学习一种新技巧，这些可以刺激大脑细胞活跃。

打哈欠

研究显示，打哈欠可促进血液流动，“冷却”大脑。大脑在“冷却”状态时工作效率会更高，因此打哈欠也许有助于提高大脑灵敏度和增强大脑功能。

阅读是全脑活动

阅读时带动视觉皮质，手要翻书眼睛要动，书本上的字转成音、音储存到前脑变成意，阅读提升智能，每读一个字就会激发相关的字，因此也可以提升创造力和想象力。

运动让大脑年轻

篇6：中医治疗精子成活率低的方法

精子具有生命力，引起精子成活率低的原因有很多，比如营养缺乏、供养不足、酸碱度的改变、附属性腺及精子通道的感染等。精子成活率1小时内可达70%,活率分四级，一般A级+B级达到50%,精子不液化会影响精子穿透宫颈能力，一般30分钟内液化。若不液化，表明前列腺功能缺乏，可能是前列腺炎，或前列腺管阻塞，功能低下引起蛋白溶解酶缺乏。

在过去相当长的一段时间里，传统疗法在治疗时，一般只治疗病发处，而潜藏处却没有治疗。有些医生在治疗时，仅仅采用西药或者中药治疗，短期内对改善症状有一定的帮助，但是，并没有根治病源，因而治疗效果不理想。精浆异常不育根据病因采取不同的治疗方法，有些可以采用激素类药物或者其他药物治疗。虽然早期效果不错，但是长期的用药会产生抗药性，这样药物就不能起到治疗作用。

最后重点说下，3D孕育微环境疗法的成功研发，在综合导致不孕或生育能力低下的已知原因上，对整个妊娠的内外部环境，尤其是“孕育微环境”进行评估，才能从根本上找到不能孕育问题。避免了以往的治标不治本，反复发作的弊端。

篇7：提高精子活性的方法

目前,关于精液冷冻保存前后ATP酶活性变化规律的研究主要集中在人、牛及鱼类等动物上,对家畜尤其是绵羊精液的研究鲜有报道[2,3,4,5,6,7,8,9,10,11]。笔者采用酶动力学分光光度法对冷冻保存前后小尾寒羊精液、精子及精清中ATP酶活性变化规律进行研究,以期为优化绵羊精液冷冻保存技术,提高冷冻精液品质和体外受精过程中选种、配种提供理论参考。

1 材料与方法

1.1 主要试剂

甘油、D-(+)-葡萄糖、蔗糖、青霉素、链霉素,美国sigma公司生产;柠檬酸钠、氯化钠、0.2%Triton X-100、Tris-HCl缓冲液(0.1 mol/L,p H值8.2)、ATP溶液,分析纯[6]。

1.2 主要仪器

高速离心机(型号为ZONKIA HC–2518),购自浙江中佳科技有限公司,紫外可见分光光度计(型号为TU-1810 PC/SPC),购自上海沪粤明科学仪器有限公司;显微镜(型号为CKX31),购自奥斯巴林(中国)有限公司。

1.3 稀释液的配制

取基础液(葡萄糖3 g,蔗糖4 g,柠檬酸钠3 g,超纯水100 m L,煮沸消毒)80 m L,加20 m L新鲜卵黄液,青霉素、链霉素各10万IU配制成保存稀释液;再取上述溶液94 m L加入甘油6 m L,配制成冷冻稀释液[1]。

1.4 精液采集与常规品质评定

选取膘情中等、体质健康、性欲旺盛的小尾寒羊种公羊,用假阴道法采集精液,立即在37℃下进行常规品质评定,要求原精液密度达到“密”级,活率在0.8以上,无异常气味,色泽乳白,用于试验。

1.5 精液冷冻保存与解冻

1.5.1 精液的稀释与平衡

精液常规检查后,将符合要求的新鲜精液根据活率和密度按3~6倍的比例,在35℃下用冷冻稀释液等温稀释,混匀,在室温下用0.25 m L的塑料细管进行分装并封口。裹8~10层纱布置于4℃冰箱中平衡2~3 h。

1.5.2 精液的冷冻与保存

将平衡好的精液细管置于自制冷冻漂浮器上(距离液氮表面2.0~2.5 cm,温度在-110~-80℃)熏蒸10 min,投入液氮保存。

1.5.3 精液的解冻

从液氮罐中取出精液细管,迅速浸入39~40℃水浴中,轻轻摇动直至融化(10~15 s)。

1.6 精子活率的评定

将稀释精液摇匀后,取中层精液10μL滴于经37℃恒温板等温预热的载玻片上,盖片后置于显微镜下放大400倍检查精子1 000个以上,分别计算呈直线运动精子数和总精子数,计算精子活率。

1.7 ATP酶活性的测定

1.7.1 ATP酶的提取

精液总ATP酶粗提液:取120μL稀释精液于离心管中,加入360μL 0.2%Triton X-100,抽提20 min,然后4 000 r/min离心30 min,保留上清液待测。

精清中ATP酶粗提液:取120μL稀释精液于离心管中,加入自制稀释液360μL 2 000 r/min离心20 min,保留上清液待测。

精子中ATP酶粗提液:将上一步所得沉淀加入0.2%Triton X-100 360μL抽提20 min,4 000 r/min离心30 min,保留上清液待测。

1.7.2 ATP酶活性的测定

取纯化水2.21 m L,ATP溶液1.10 m L,混匀后加入25℃预热的ATP酶待测液0.19 m L(空白管用纯化水代替),迅速摇匀倒入比色皿(光径为1 cm),700 nm处每隔1 min测定1次OD值,每次测5 min。

1.7.3 ATP酶活性的计算

公式为:酶活力=(测定管OD值-对照管OD值)×1/(60×取样量)×样品稀释倍数。

1.8 数据的统计与分析

采用SPSS 10.0统计软件对试验数据进行统计分析,差异显著性采用Excel软件中数据分析工具库进行描述统计、t检验和方差分析。试验重复5次以上。

2 结果与分析

结果见表1。

由表1可见,与冷冻前相比,冷冻后小尾寒羊精子中ATP酶活性极显著降低(P<0.01),精清中ATP酶活性极显著升高(P<0.01),说明冷冻保存对绵羊精子中ATP酶的活性造成了严重损伤。冷冻前后精子活率与精子ATP酶活性均呈极显著正相关(r=0.979和0.968,P<0.01),说明精子ATP酶活性能够反映精子活率,可作为精液品质评价的指标。

注:同列数据肩标字母不同表示差异极显著(P<0.01);相关系数仅表示精子活率与精子ATP酶活性的相关性,**表示极显著相关(P<0.01)。

3 讨论与结论

ATP酶存在于组织细胞及线粒体的内膜上[5],可催化ATP水解释放出大量能量,供生物体进行各种需能生命活动。精子在冷冻保存过程中经历了与冷冻剂相互作用、降温冷冻、超低温贮存和解冻复温的过程,这些过程中的物理和化学效应(p H值、渗透压的变化,冰晶的形成等)都有可能使精子受到损伤,导致ATP酶活性受到影响[6]。

本研究中,与冷冻前相比,冷冻后精清中ATP酶活性极显著升高(P<0.01),而精子中的ATP酶活性极显著降低(P<0.01),说明冷冻保存对精子结构和功能造成了损伤。这可能是因为:1)冷冻过程中冰晶的形成和细胞内外渗透压的改变导致精子膜的损伤,精子膜中的类脂蛋白从细胞结构中分离,使细胞膜原有空间构象发生改变,精细胞中的酶释放到精清中[7];2)内源性精子类脂过氧化反应能造成精子膜的严重损伤,导致细胞内容物的释放,外源性脂肪酸过氧化物亦可损伤精子膜,造成同样的细胞内酶的释放[8],这与陈田飞等[9]的研究结果一致。

本试验结果亦表明,冷冻前后精子活率与ATP酶活性具有较好的线性关系,两者均呈极显著正相关(r=0.979和0.968,P<0.01),即ATP酶活性越高,精子活率越高。说明ATP酶活性的测定可以作为绵羊精液质量评价的可靠指标。这与黄晓荣等[10]和熊承良等[11]的研究结果一致。采用酶动力学分光光度法测定ATP酶活性具有用量少、操作简单、成本低等优点,易于在基层实验室中进行应用与推广。

摘要：为了充分发挥和提高优良种公羊的利用率,提高绵羊冻融精液品质,试验采用酶动力学分光光度法对冷冻保存前后小尾寒羊精子和精清中ATP酶活性变化进行研究。结果表明:冷冻保存小尾寒羊精子中ATP酶活性(83.76±3.53)U/m L与冷冻前(175.42±4.32)U/m L相比极显著降低(P<0.01),精清中ATP酶活性(164.96±3.22)U/m L与冷冻前(73.51±2.23)U/m L相比极显著升高(P<0.01);冷冻前后精子活率与精子ATP酶活性均呈极显著正相关(r=0.979和0.968,P<0.01)。说明冻融过程对绵羊精子中ATP酶的活性造成了严重损伤。绵羊冻融精子ATP酶的活性可以在一定程度上预测精子活率,并可作为绵羊精液品质评价的重要指标。

关键词：小尾寒羊,冻融,精液冷冻,ATP酶,活性

参考文献

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