注射方法

注射方法（精选十篇）

注射方法 篇1

1 资料与方法

1.1 一般资料

选择2010年6月-2011年5月在我科住院接受低分子肝素钠 (杭州九源基因工程有限公司生产) 抗凝治疗的不稳定型心绞痛和急性心肌梗死患者60例, 其中男41例, 女19例;年龄43~75岁。每位患者注射低分子肝素钠7d, 每12小时1次。注射前常规检查血常规及凝血系列, 均在正常范围内。

1.2 方法

对照组采用常规皮下注射法:选择腹壁脐周上下5cm、脐旁10cm范围内多部位按顺序轮流间隔进行皮下注射 (脐周1cm范围内除外) , 且避开皮肤破损、瘢痕、斑或痣的部位, 2次注射间距为2cm, 常规消毒2次, 左手绷紧注射部位皮肤, 右手持注射器, 右手食指固定针栓, 针头斜面朝上, 与皮肤成30°~40°角, 将1ml一次性注射器针头的前2/3刺入皮内, 回抽无回血后缓慢注入药液, 注射完毕迅速拔针, 用干棉签按压针眼5min, 力度以皮肤下陷1cm为准。试验组采用垂直皱褶法及留置气泡技术皮下注射:选择腹壁脐周上下5cm、脐旁10cm范围内多部位按顺序轮流间隔进行皮下注射 (脐周1cm范围内除外) , 且避开皮肤破损、瘢痕、斑或痣的部位, 2次注射间距为2cm, 注射前抽吸药液时多抽入0.1ml空气, 注射时将空气弹至活塞端, 常规消毒2次, 同法消毒护士左手的拇指与食指, 左手拇指与食指捏起注射部位皮肤形成皱褶, 右手持注射器 (1ml一次性注射器) 在皮褶最高点针头垂直 (90°) 刺入, 深度以针头进去皮褶为宜。进针0.5~1.0cm, 缓慢注射药液, 注射完毕刚好使0.1ml空气遗留于针管乳头部位, 停留5s后再拔针, 用干棉签按压穿刺部位5min, 压迫力度为皮肤下陷1cm为准。住院期间全程观察每位皮下出血例次, 并测量每次出血面积。

1.3 判断标准

皮下出血面积直径0.5~1.0cm为轻度出血, 1.1~2.0cm为中度出血, >2.0cm为重度出血。

1.4 统计学方法

计数资料以率 (%) 表示, 组间比较采用χ2检验, P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

试验组局部皮下出血率低于对照组, 局部出血程度轻于对照组, 差异均有统计学意义 (P<0.01) 。见表1、表2。

注:与对照组比较, *P<0.01

注:与对照组比较, *P<0.01

3 讨 论

低分子肝素是一种由普通肝素分解强化而成的低分子肝素钙或钠盐, 为有效抑制血栓形成的抗凝新药, 因其抗凝、抗血栓作用强、不良反应小而广泛应用于临床。其作用机制是通过与抗凝血酶Ⅲ及其复合物结合, 加强抗凝血酶Ⅲ对Xa因子的灭活而起抗血栓的作用[2]。临床应用低分子肝素常见的并发症主要是注射局部皮下出血、瘀斑、硬结形成, 其导致注射局部出血是多因素的, 除与低分子肝素抗血栓作用强于肝素有关外[3], 多与注射部位、注射深度、注射角度、压迫时间、力度及注射点间距、针头大小、针头斜面是否带入药液等因素有关, 目前在注射部位、注射深度、压迫时间、力度以及注射点间距方面已有大量文献报道, 且已有定论, 即多选用腹壁皮下注射、进针深度0.5~1.0cm、2次注射间距为2cm、压迫3~5min[4]及压迫力度为皮肤下陷1cm。但在其他方面尚无取得一致意见。本文通过长期临床实践总结, 采用改良皮下注射方法显著减少了临床注射部位出血的发生率和减轻了注射部位的出血程度。

3.1 垂直皱褶法

即在注射时将局部皮肤捏起, 并使之形成一皱褶, 针头垂直刺入, 回抽无回血, 注入药物, 并在注射过程中始终保持皮肤皱褶状态。此法将局部皮肤捏起使捏起部位皮下间隙拉大, 能保持药液均匀注入皮下组织, 药液易于扩散, 同时捏起的部位与肌肉层隔开, 防止针头刺入肌肉层的毛细血管, 从而有效地防止了皮下出血的发生。此外此法还可防止体痩者损伤腹壁小血管, 导致出血。而且采用垂直进针的方法, 减少了针头与皮肤的接触面积, 比倾斜刺入可避免更多的毛细血管损伤, 减轻了疼痛, 增加了患者治疗的顺应性。

3.2 留置气泡技术

常规注射方法在拔针时仍充满药液, 药液易溢出渗漏于皮下组织, 进入破损的血管, 增加血管通透性, 导致针眼处血管出血。根据一次性注射器内乳头及针头残留量为0.07~0.08ml的原理, 笔者采用留置气泡技术, 即在抽吸药液时多抽入0.1ml空气, 在注射时先将空气弹至活塞端, 注射完毕前将0.1ml空气继续推入针管乳头部位, 采用这种方法注射完毕后, 可使针头部分药液全部进入皮下组织, 既可避免浪费, 又避免了拔针时残余药液渗入皮下, 从而降低浅表皮下组织中的药液浓度而减少对局部组织的刺激, 减少皮下出血。

在临床广泛使用低分子肝素治疗时可能发生多次或较大面积的皮下出血, 使患者易产生紧张心理, 同时也对护士产生不信任感。笔者在临床实践中证明采用垂直皱褶法和留置气泡技术皮下注射法, 结合合适的按压时间和力度, 能有效降低皮下出血发生率和减轻了出血程度, 提高了患者对治疗的顺应性及对护士工作的满意度。

参考文献

[1]王丽娜, 周郁秋.低分子肝素皮下注射方法研究进展[J].护理研究杂志, 2008, 22 (2) :391-392.

[2]陆伟丽, 苏伟平.改良低分子肝素注射方法减少皮下出血的研究进展[J].护理学杂志, 2008, 23 (11) :75-77.

[3]姜玲君.注射低分子肝素致皮下出血的原因分析[J].医药世界杂志, 2005, 5 (6) :12-13.

肌肉注射硬结的处理方法 篇2

肌肉注射硬结是在肌肉注射中经常出现的现象，可以因长期反复注射引起，也可以因注射刺激性强、吸收困难的药物引起，还可因注射深度不够，未达到深部肌肉组织引起。采取一些相应的措施，可以避免硬结的发生，如经常变换注射部位；对刺激人的药物尽量不选择肌肉注射；根据患者的体型，选用合适的针头，掌

握好深度等。

一旦发生肌肉注射硬结，不仅给患者造成痛苦，影响当前的药物治疗，也给今后的继续治疗带来不利。所以，应采取积极的措施治疗。医院里常用的方法有：用2％普鲁卡因2毫升注射于硬结周围，隔日一次；50％硫酸镁局部湿热敷。

但是，上述方法患者不易掌握和实施。为此，再介绍几种适于在家中采用的外敷、外涂、外贴疗法。①用清洁毛巾湿热敷，如能用艾叶加水适量煮沸，放置至温度适宜时进行湿热敷，效果更佳；⑦用少量食醋将云南白药中的粉末调成糊状，涂于硬结处；③取新鲜土豆切成薄片，敷贴于硬结表面，干后更换；④将新鲜土豆切碎，加适量食醋捣成泥状，涂于硬结处；⑤用伤湿止痛膏贴于硬结处（孕妇禁用）。上述措施均每日两次，每次15－30

分钟。

这些方法操作简便，材料易得，无痛苦，无副作用，疗效也

除皱新方法：注射自体成纤维细胞等 篇3

皱纹的产生是皮肤老化的突出表现。消除面部皱纹的治疗方法很多，皮肤填充注射是治疗早期静态皱纹的首选方法。目前，用于填充的材料主要有生物组织和人工合成材料两种。前者包括自体脂肪、自体真皮、自体成纤维细胞、异体胶原、牛胶原等，后者有液硅、生物塑料等。

近日，国内部分医疗机构尝试采用注射体外培养的自体成纤维细胞的方法进行除皱，取得较好疗效。由于注射入体内的是自身细胞，避免了异体、异种或人工材料可能导致的过敏、免疫排斥及异物反应，安全性高。此外，自体成纤维细胞可以长期存活于体内并增殖，在注射后即刻及较长时间内都具有治疗效应，与普通填充剂（如胶原和透明质酸）治疗效果随时间递减的特点相比，具有明显的优越性。不过，由于该技术正处于起步阶段，缺乏更长期的随访结果，远期疗效还有待进一步观察。

适应对象：脸部静止性皱纹，如鱼尾纹、眉间皱纹、鼻唇沟纹等。

开展单位：浙江省人民医院

脱敏新方法：舌下含服免疫治疗

近年来，过敏性疾病的发病率逐年上升，过敏性哮喘、变应性鼻炎、特应性皮炎等疾病严重威胁着人们的身体健康。研究显示，避免接触过敏原是最根本、有效的预防疾病发作的方法，而脱敏治疗则是目前唯一针对过敏性疾病的病因进行治疗的方法。

常用的脱敏治疗是指将诱发哮喘或过敏性鼻炎发作的特异性过敏原，如尘螨等，经特殊加工后，配制成各种不同浓度的提取液，经反复皮下注射进入患者体内，剂量从小到大，浓度由稀到浓，使患者对该过敏原产生耐受，以预防发生新的过敏，并显著改善过敏症状。脱敏治疗一般需要3～5年，长期、频繁注射给患者带来诸多不便。近年来，国内部分医疗机构尝试开展一种新的脱敏疗法，该疗法不用注射，只需舌下含服过敏原免疫制剂，即可达到与注射治疗相似的脱敏效果，且安全性高，发生严重反应（如过敏性休克）的概率非常低，应用前景十分广阔。

开展单位：上海交通大学医学院附属仁济医院、江苏省人民医院、北京协和医院等

腰突症治疗新手段：中药熏蒸床

随着生活节奏的加快，工作压力的增大，正常人群中患腰椎间盘突出症的患者越来越多。中药熏蒸技术是中医传统的治疗方法，历史悠久，属于自然疗法的范畴，是中医“内病外治”的经典方法之一。其原理是通过熏蒸的方法，将含药蒸气渗透、扩散入患者的皮肤，进而深达脏腑，以起到促进血液循环、通经活络、活血化瘀、行气止痛的目的。近日，山东省立医院推拿科最近研制出一种国家级实用新型专利——中药熏蒸床（如图），在临床推广应用后，收到显著疗效。中药熏蒸床使用的中药方剂是用于治疗腰突症疼痛的20余种中药材，如当归、枸杞、丹参等。治疗前，医生先将中药装入袋中，并放入熏蒸锅内浸泡6小时。治疗时，中药煮沸后产生的药蒸气，以对流和传导的方式直接作用于疼痛部位，可起到活血化瘀、消炎止痛、祛风散寒的作用。治疗过程中，患者的疼痛症状有显著改善和减轻。同时，中药蒸气对皮肤的温热刺激可使患者心情放松、肌肉松弛，疗效更佳。熏蒸后，中药袋还可以进一步利用，用油布包裹后，可用作局部热敷，使患处继续保持温热，巩固治疗效果。

提高注射疗效的方法 篇4

基本用药配方

1.氟美松 (地塞米松) 磷酸钠按猪体重每5千克每次1毫升的剂量用药。

2.可拉明 (尼克刹米) 按猪体重每15千克每次1支 (每支1.50毫升, 内含尼克刹米0.375克) 的剂量用药。

3.盐酸卡那霉素按猪体重每千克每次2毫升剂量用药。

使用说明

以上三种药组成基本方。除此基本方外, 还应结合病猪的具体病情再注射其他药物。

1.咳嗽、气喘不止的病猪, 除使用基本方外, 另混合或单独肌注3%麻黄素, 按猪体重每15千克每次1毫升剂量用药。10分钟后, 再按每30千克体重每次肌注磺胺嘧啶0.50克。

2.猪突然瘫痪, 除使用基本方外, 再单独注射新斯的明, 按每25千克体重每次1毫升的剂量给药。

3.对呕吐不止的病猪, 除使用基本方外, 再混合或单独注射盐酸甲氧氯普胺 (胃复安) , 按猪体重每25千克2毫升的剂量给药。

4.对下痢不止但不带血的病猪, 除使用基本方外, 另肌注水杨酸偶氮磺胺嘧啶, 按猪每30千克体重10毫升的剂量给药。

5.对下痢不止且带血的病猪, 除使用基本方外, 另肌注甲硝唑10毫升 (每15千克体重每次用药量) , 10分钟后, 再按每千克体重每次肌注水杨丌丌酸偶氮磺胺嘧啶注射液毫升。

6.对体表青紫、指压不褪色、长时间不食的病猪, 除使用基本方外, 再单独肌注复合维生素B, 按猪每10千克体重每次2毫升的剂量给药。

7.对粪便干硬不下的病猪, 除使用基本方外, 再灌服硫酸钠或硫酸镁, 用量为大猪50克、中猪30克、小猪10克。

效果

注射方法 篇5

流动注射化学发光法测定卡比多巴新方法

卡比多巴(Carbidopa),化学名为(-)-L-α-肼基-3,4-二羟基-α-甲基苯丙酸一水合物,是美国Merck公司开发的多巴脱羧酶抑制剂,因不能透过血脑屏障,仅抑制外周左旋多巴(levodopa)转化为多巴胺,使前者在循环中的量增高,藉以增加脑内多巴胺的浓度,改善震颤麻痹症状.

作 者：汲中玲 张泾凯 李建国  作者单位：苏州大学材料与化学化工学部,苏州,215123 刊 名：分析化学  ISTIC SCI PKU英文刊名：CHINESE JOURNAL OF ANALYTICAL CHEMISTRY 年，卷(期)： 37(z1) 分类号：O65 关键词： 

注射用盐酸头孢替安无菌检查方法 篇6

【关键词】无菌检查法、注射剂、盐酸头孢替安

【中图分类号】R978.1【文献标识码】A【文章编号】1672-5158（2013）02-0330-01

（1） 供试品溶液制备：

规格2.0g取供试品20支，每支分别加0.9%无菌氯化钠溶液6ml使溶解，再分别吸出3ml转移至500ml 0.9%无菌氯化钠溶液中，摇匀，制成约40mg/ml的供试溶液；

规格1.0g取供试品20支，每支分别加适量0.9%无菌氯化钠溶液使溶解后，全部转移至500ml 0.9%无菌氯化钠溶液中，摇匀，制成约40mg/ml的供试溶液；

规格0.5g取供试品20支，每支分别加适量0.9%无菌氯化钠溶液使溶解后，全部转移至500ml 0.9%无菌氯化钠溶液中，摇匀，制成约20mg/ml的供试溶液；

规格0.25g 取供试品30支，每支分别加适量0.9%无菌氯化钠溶液使溶解后，全部转移至500ml 0.9%无菌氯化钠溶液中，摇匀，制成约15mg/ ml的供试溶液；

（2）薄膜过滤：

将上述制备好的供试品溶液置3个滤筒中同时过滤，每筒过滤供试液约170ml；以加入青霉素酶的0.9%无菌氯化钠溶液为冲洗液，总冲洗量1000 ml（预先加入青霉素酶1支，2ml/支，酶活力不低于300万单位/ ml），分次冲洗，即单筒冲洗量约300ml，加酶不低于200万单位/筒；以大肠埃希菌为阳性对照菌，依法检查（《中国药典》2010年版二部附录XI H），应符合规定。

验证用具：

1 供试品

注射用盐酸头孢替安2.0g（批号B201012302、B201012304 、B201012306）

2 培养基

由北京陆桥技术有限责任公司及奥博星生物技术有限责任公司提供

1 硫乙醇酸盐流体培养基 批号：100925

2 改良马丁培养基 批号：100611

3 营养肉汤培养基 批号：091010

4 玫瑰红钠琼脂培养基 批号：20100405

5 营养琼脂培养基 批号：20100306

验证试验用菌种名称及其编号：由中检所提供

1 金黄色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）[CMCC（B） 26003]；

2 枯草芽孢杆菌（Bacillus subtilis）[CMCC（B）63501]；

3 大肠埃希菌（Escherichia coli） [CMCC（B）44102]；

4 生孢梭菌（Clostridium sporogenes）[CMCC（B）64941]；

5 白色念珠菌（Candida albicans）[CMCC（F）98001]；

6 黑曲霉（Aspergillus niger）[CMCC（F）98003]。

青霉素酶（2 ml/支，酶活力不低于300万单位/ml）

验证步骤：

1.1 菌液的制备

（1）接种金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、枯草芽孢杆菌的新鲜培养物至营养肉汤培养基中，接种生孢梭菌的新鲜培养物至硫乙醇酸盐流体培养基中，于30～35℃培养18～24小时；接种白色念珠菌的新鲜培养物至改良马丁培养基中，于23～28℃培养24～48小时；分别取上述培养物1ml，加至9ml 0. 9%无菌氯化钠溶液中，10倍稀释至10-7、10-7、10-5、10-6，10-5，制成每1ml含菌数小于100cfu/ml的菌悬液，混匀备用。

（2）取经23～28℃培养5-7天的黑曲霉改良马丁琼脂斜面培养物，加入3-5ml含0.05%（ml/ml）聚山梨酯80的0.9%无菌氯化钠溶液将孢子洗脱，然后，用管底部有一圆孔并带有薄的无菌棉花的无菌试管滤出孢子悬液至无菌空试管中，再用上述0.9%无菌氯化钠溶液制成每1ml含孢子数小于100cfu孢子悬液，混匀备用。

（3）菌液计数：分别取上述细菌菌液和真菌菌液1m加入培养皿，每种菌液做平行2皿，注入相应琼脂培养基15～20ml。细菌30～35℃培养48小时；真菌23～28℃培养72小时。

（4）判断标准

每1ml菌液中含菌数小于100cfu。

（5）计数结果：见无菌检查法验证试验记录表1。

2.2 产品验证

（1）供试品溶液制备：

1）供试品溶液制备：取供试品20支，每支分别加0.9%无菌氯化钠溶液6ml使溶解，再分别吸出3ml转移（1/2量转移）至500ml 0.9%无菌氯化钠溶液中，制成约20mg/ml的供试溶液，摇匀备用。

（2）方法验证：

2）试验组：取一全封闭集菌培养器（三筒），将上述其中1份供试液按薄膜过滤法置3个滤筒中过滤（每筒过滤供试液约170ml，含供试品约6. 6g）。供试液过滤后，用总量1000ml的0.9%无菌氯化钠溶液（预先加入青霉素酶1支，2 ml/支，酶活力不低于300万单位/ ml）同时冲洗三个滤筒，单筒冲洗量约300 ml，分次冲洗，每次100ml，每次过滤前应充分振摇。冲洗液过滤后，三筒均注入硫乙醇酸盐流体培养基100ml，其中一筒不加菌液，作为本次试验的供试品对照，供试品对照应无菌生长；另外两筒，一筒加入上述1.1中制备好的大肠埃希菌试验菌液1ml，一筒加入金黄色葡萄球菌试验菌液1ml，同法操作，共做3组，6种试验菌及相应培养基逐一进行验证，将所有培养基筒置规定条件下培养观察。

3）对照组：另取一全封闭集菌培养器，不过滤供试品和冲洗液，直接注入硫乙醇酸盐流体培养基100ml，并加入上述1.1中制备好的大肠埃希菌试验菌液1 ml，作为对照。同法操作，6种试验菌及相应培养基逐一进行验证，将所有培养基筒置规定条件下培养观察。

4）阴性对照组：另取一全封闭集菌培养器，各过滤冲洗用0.9%无菌氯化钠溶液300ml后，再分别加入硫乙醇酸盐流体培养基和改良马丁培养基各100ml，置规定条件下培养观察。

5）培养：硫乙醇酸盐流体培养基筒30-35℃培养3天；改良马丁培养基筒23-28℃培养5天，每天观察并记录结果。

6）试验结果：见无菌检查法验证试验记录表2。

3 结果判断

该品种按上述方法进行验证试验，各对照管培养48～72小时均生长良好；与对照管比较，含供试品各容器中的试验菌均生长良好；供试品对照管及阴性对照管培养5天，均无菌生长。试验结果表明：该供试品在此检验量和检验条件下抑菌作用可忽略不计，故可照此方法进行该品种的无菌检查，根据中国药典2010年版附录XIH的相关规定及各试验菌生长情况，阳性对照菌为大肠埃希菌。

4 结论

提高犬免疫注射成功的方法 篇7

1 免疫程序

(1) 如果犬是从宠物市场买回来的, 从没有注射过疫苗, 年龄在2月龄至1龄的幼犬, 经检查身体健康者, 应注射2次犬六联疫苗 (DHHPi+L) 、2次犬冠状病毒疫苗 (C) 、2次犬窝咳和犬副流感疫苗 (KC) 及1次犬七联疫苗 (DHPPi+RL) , 或犬六联和单联狂犬病疫苗 (DHPPi+L+R) 。免疫程序为:首次注射六联疫苗 (DHPPi+L) , 第3周注射犬冠病毒疫苗 (C) 和鼻腔滴注犬窝咳及犬副流感疫苗 (KC) , 第4周再次注射六联疫苗 (DHPP i+L) , 第7周再次注射犬冠状病毒疫苗 (C) 和鼻腔滴注犬窝咳及全副流感疫苗 (KC) , 第8周注射犬七联疫苗 (DHPPi+RL) 或犬六联和单联狂犬病疫苗 (DHPPi+L+R) 。以后每年春秋两季鼻腔滴注犬窝咳和犬副流感疫苗 (KC) 各1次;皮下注射犬七联疫苗 (DHPP i+RL) 或犬六联和单联狂犬疫苗 (DHPPi+L+R) 1次和犬冠状病毒疫苗 (C) 1次。

(2) 如果犬是从宠物市场买回来的, 又没有注射过疫苗, 年龄在12个月龄以上的成年犬, 应注射1次六联疫苗 (DHPPi+L) 、2次犬窝咳及犬副流感疫苗 (KC) 、1次犬冠病毒疫苗 (C) 及1次犬七联疫苗 (DHPPi+RL) 或六联和单联狂犬病疫苗 (DHPPi+L+R) 。免疫程序为:首次注射六联疫苗 (DHHP i+L) , 第3周犬冠状毒疫苗 (C) 和鼻腔滴注犬窝咳及犬副流感疫苗 (KC) , 第4周注射犬七联疫苗 (DHPPi+L+RL) 或犬六联疫苗和单联狂犬病疫苗 (DHPPi+R+L) , 第7周再次鼻腔滴注犬窝咳及犬副流感疫苗 (KC) 。以后每年春秋两季鼻腔滴注犬窝咳和犬副流感疫苗各1支;皮下注射犬七联疫苗 (DHPPi+L+RL) 或犬六联疫苗 (DHPPi+R+L) 1次和犬冠状病毒疫苗 (C) 1次。

2 疫苗的正确使用方法

(l) 疫苗使用前, 不要用手指接触瓶盖, 要用75%酒精棉球消毒瓶盖, 稍等片刻待酒精挥发后再抽取疫苗。

(2) 最好使用一次性消毒注射器, 如果使用人工消毒的注射器进行疫苗接种时, 一定不要让疫苗与残留消毒剂或酒精接触。

(3) 疫苗使用前轻轻地摇匀。

(4) 冻干苗应用液态苗或专用无菌的稀释液来溶解, 待完全溶解后即抽完并立即使用。

(5) 疫苗注射要以无菌接种方式, 在背部皮下接种。

3 免疫注射时应注意的事项

(1) 疫苗接种前必须向宠物主人详细了解犬的近况, 仔细进行临床检查。

(2) 疫苗注射后最好让犬在诊所或医院停留10 min左右, 以便观测。

(3) 疫苗必须存储于阴暗处, 温度维持在2~8℃, 不可将疫苗长时间或重复地暴露于高温下。

(4) 不可将液态苗冻结。

(5) 由于疫苗接种10 d才可产生免疫力, 故应嘱咐犬主在此阶段应仔细护理犬只。

(6) 皮下接种狂犬病疫苗后, 有时候在接种处可暂时触摸到肿块, 属于正常现象。

4 免疫注射时常见的过敏和应激反应

在兽医临床上有时因品种的差异、周围环境的突然改变、宠物情绪的异常变化、身体状况不佳等原因, 犬在接种疫苗后, 偶尔会出现过敏或应激反应。

4.1 过敏反应

(1) 头部或眼睑肿大, 全身瘙痒, 通常3~6 h后会自愈。如有必要可皮下注射盐酸地塞米松。 (2) 全身颤抖或头部抽搐, 流涎, 此时可注射硫酸阿托品, 如有必要可皮下注射盐酸地塞米松。 (3) 食欲不振或食欲废绝, 全身疼痛, 精神呆滞, 昏昏欲睡, 喜欢躲避在阴暗处。通常2~4 d后自愈。如有必要可皮下注射盐酸地塞米松。

4.2 应激反应

有时犬在注射疫苗后几分钟内 (通常在10min左右) 发生抽搐或休克等应激反应, 此时应立即注射盐酸肾上腺素解救。

5 小结

肌内注射方法的改进探索 篇8

关键词：肌内注射,疼痛

肌内注射为临床重要给药方式之一,具有操作简单,血药浓度达峰快,吸收完全等优点,但注射时的疼痛等常给患者造成心理恐惧,降低其依从性,反复多次注射还容易出现肌肉萎缩、硬结等不良反应,一直以来,不少学者都曾尝试对其改进。目前世界上常用的注射方法有3种:常规注射法、Z径路注射法(Z-track method)、气泡封堵注射法(air-bubble metheod),Z径路注射法胜行于英国、法国等欧洲国家,气泡封堵注射法盛行于美国、加拿大等北美洲国家,我国主要使用常规注射法[1,2]。为继续探索对基本注射法的改进,本实验通过对比针尖斜面平行于肌纤维注射时的疼痛与常规肌内注射法注射时的疼痛,尝试减轻注射疼痛等的可行性。

1 资料与方法

1.1 一般资料

2011年12月在川北医学院召集10名在校学生作为健康志愿者,6男4女,最大年龄28岁,最小年龄23岁,平均(24.0±1.2)岁,大学本科及以上学历,均没有发育不良、感觉功能障碍、智力障碍、糖尿病等情况。将10名健康志愿者随机分为A、B两组,每组3男2女。

1.2 方法

自制VAS疼痛评分卡片:A4纸上画一条10cm长线段,起点标为0并注明“无疼痛”,末端标为10并注明“最剧烈的疼痛”,分为10等分,在5cm处标5并注明“疼痛如果持续,将影响休息”[3],在同一时间将志愿者带至同一休息室,将休息室及注射室温度控制在22～24℃,相对湿度控制于60%～69%以使志愿者处于舒适的环境[4]。与志愿者一起再次复习VAS量表含义及使用方法后,由助手逐一带领志愿者进入注射室试验。试验使用单盲法,注射器使用上海双鸽实业有限公司生产的2ml注射器,批号:110412,针头使用其配套的6号针头,操作时,为每位志愿者准备好2只该注射器,每只吸1ml 0.9%氯化钠溶液。A组志愿者注射时,在右上臂三角肌最厚处用常规肌内注射法注射1ml 0.9%氯化钠溶液,再在左上臂三角肌肉以改进后的注射法注射1ml 0.9%氯化钠溶液,即:进针前先调整注射器,使针尖斜面平行于肌纤维,垂直于皮肤进针注射。注射完毕立即让受试者在VAS卡上标记两侧进针瞬间的疼痛值,然后由助手带至第2休息室。B组受实者右侧三角肌使用改进后的注射法,左侧使用常规注射法,余同A组。

1.3 统计学方法

计量资料以$(\overline{x}\pm \text{s})$表示,采用t检验,以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

无论是左侧使用新注射法(A组)还是右侧使用新注射法(B组),其疼痛的平分均值均小于常规注射法,差异均有统计学意义(P<0.05,见表1)。

3讨论

一定范围内疼痛的强度与刺激的强度相关。肌肉具有丰富的痛觉神经感受器;改进后的注射法在注射时疼痛较常规注射法明显减小,统计分析具有显著差异,可能是针尖斜面平行于肌肉纤维时,消除了针尖侧面对肌肉纤维的切割作用,从而减小了注射时的刺激。改进后的注射法是否可减少对组织的损伤、减少肌肉注射不良反应的发生率,还有待动物实验和临床观察证实。

参考文献

[1]Mac-Gabbann L.Comparison of two depot injection techniques[J].Nursing Standard,1998,12(37):39-41.

[2]宋艳丽,王明丽.初探肌内注射方法的改良[J].临床与医疗,2010(19):822.

[3]赵英.疼痛的测量和评估方法[J].中国临床康复,2002,6(16):2347-2348.

建立注射用奥扎格雷钠无菌检查方法 篇9

关键词：注射用奥扎格雷钠,无菌检查方法,试验

方法:取本品,用薄膜过滤法处理后,依法检查(中国药典2010年版二部附录ⅩⅢ)。结果:经方法学验证,与对照管比较,含供试品各容器中的试验菌均生长良好。结论:供试品在该检验条件下无抑菌作用,可照此检查法和检验条件进行供试品的无菌检查,结果准确可靠。

1 仪器与试药

1.1 仪器设备:

酒精灯、火柴、镊子、剪子、接种针、脱脂棉、纱布、三角砂刀、超净台、恒温培养箱及生化培养箱、真空泵、过滤器、微孔滤膜、高压蒸气灭菌器、电炉子、p H计、恒温干燥箱、试管架、试管、移液管、培养皿、量杯、三角烧杯。

1.2 供试品:

注射用奥扎格雷钠:规格20mg/支,批号060401、060402、060403;规格80mg/支,批号060401、060402、060403。

1.3 培养基:

硫乙醇酸盐流体培养基批号040908,改良马丁培养基批号050110,营养琼脂培养基批号050902,营养肉汤培养基批号050919,改良马丁琼脂培养基050110,蛋白胨050608以上培养基均由中国药品生物制品检定所提供。

1.4 菌种:

金黄色葡萄球菌[cmcc(B)26003]、大肠埃希菌[cmcc(B)44102]、枯草芽孢杆菌[cmcc(B)63 501]、生孢梭菌[cmcc(B)64941]、白色念珠菌[cmcc(F)98 001]、黑曲霉[cmcc(F)98 003]由中国药品生物制品检定所提供。

2 方法与结果

2.1 培养基的适用性检查

2.1.1 无菌性检查。

依法配制硫乙醇酸盐培养基和改良马丁培养基,每批培养基随机取5支,按照培养条件,培养14天,逐日观察结果。结果表明:各培养基均无菌生长。

2.1.2 灵敏度检查。

取9支装量为12ml的硫乙醇酸盐流体培养基分别接种含菌量小于100cfu的金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌、枯草牙孢杆菌、生孢梭菌各2支,另1支为空白对照。培养3天,逐日观察结果,见表1。取3支装量为9ml的改良马丁培养基,2支接种小于100cfu的白色念珠菌,另1支为空白对照。培养5天,逐日观察结果,见表2。

2.2 试验方法验证

2.2.1 冲洗液的制备。

取蛋白胨1.0g,加水1000ml,微温溶解,滤清,调节p H值至7.1±0.2,分装,灭菌。

2.2.2 考察加冲洗液的检查方法。

取本品20支,每支分别加入适量生理盐水溶解后,在溶液中加入少于100cfu的金黄色葡萄球菌液1ml,混匀,采用开放式滤器过滤,以0.1%蛋白胨水溶液作为冲洗液,冲洗量300ml。取滤膜放入50ml的硫乙醇酸盐培养基。另取一装有同体积培养基的试管,加入等量的金黄色葡萄球菌液1ml,作为对照,在30~35℃温度下培养3~5天,考察金黄色葡萄球菌的生成情况,结果见表3。上述结果表明,本品按上述方法检查时对金黄色葡萄球菌不体现抑菌性。

2.2.3 其他试验菌考察。

以同样的方法对其余4种试验菌逐一试验,其中大肠埃希菌、枯草芽孢杆菌、生孢梭菌加到50ml硫乙醇酸盐流体培养基中,白色念珠菌、黑曲霉加到50ml改良马丁培养基中,其他同上操作,结果见表4。从表4可以看出:在规定的时限内,与对照管比较,各培养管中含供试品的试验菌均同样生长良好,说明供试品在该检查条件下无抑菌作用。可照此条件进行供试品的无菌检查。

3 供试品的无菌检查方法

取注射用奥扎格雷钠同一批号的供试品60支,每支加入适量生理盐水溶解后,混匀,采用开放式滤器过滤,以0.1%蛋白胨水溶液作为冲洗液,冲洗量300ml。取出滤膜分成三份,其中两份分别加到50ml的硫乙醇酸盐流体培养基和改良马丁培养基的试管中,另一份作为供试品阳性对照加到含金黄色葡萄球菌的培养管中,按规定的温度培养48~72小时。同时取相应的溶剂、冲洗液同法操作,作为阴性对照。结果见表5。

“-”表示呈阴性反应,“+”表示呈阳性反应,“++”表示生长良好。

结果表明:上述试验具有可操作性。

参考文献

[1]中国药典(2010年版).

注射剂检验方法的探究与建议 篇10

注射剂系指药材经提取、纯化后制成的供注入体内的溶液、乳状液及供临用前配制成溶液或混悬液的粉末或浓溶液的无菌制剂, 是医疗上一种重要的试剂, 主要有液体试剂和粉末试剂两种。注射剂对我们而言, 并不陌生, 在遇到感冒、发烧或是过敏性疾病时, 常常需要注射该类制剂, 那么注射剂自身有什么特点使其在医疗上有如此重要的地位呢?首先注射剂的药效迅速, 不同于口服药物, 注射剂通过皮下、肌肉或静脉直接注射, 可以直接参与人体内的血液循环, 将药物输送到人体的各个部位。不像口服类药物需经过口腔、食道、胃等消化系统, 相对而言, 经过的时间较长。除了药效迅速之外, 实用性强也是其优点之一。上述提到注射剂可以直接注射入人体, 对于一些不能或不适宜服用口服药的患者, 是一大福利。再者不经过胃内各种消化酶的作用, 还可以更大程度的保持药效。耐贮存也是其优良特性之一, 注射剂是将药液或粉末密封于特制的容器之中与外界空气隔绝, 且在制造时经过灭菌处理或无菌操作, 故较其他液体制剂耐贮存。当然注射剂也具备自身的缺点, 首先其对注射环境的要求较高, 要求无毒无菌干扰。此外注射剂使用不便, 注射疼痛, 尤其是一些过敏类药剂。俗话说, 是药三分毒, 并且注射剂是直接注入人的血液内, 所产生的毒副作用更是直接性的, 因此近些年来, 我国安全卫生检验部门对注射剂的安全性问题更加重视, 针对其检验方法也是逐渐在完善。接下来, 笔者主要针对如何更好的进行注射剂的检验及其基本的检验方法做详细阐述。

2 提高检验准确性的方法

2.1 严格操作规范

就目前我国的基本情况而言, 我国对注射剂的安全检验要求还不够完善, 直接导致了在检验过程中的局限性。为了提高医学检验的标准, 首先需要遵循相关法律规定, 严格操作规范。笔者通过长时间的调查研究发现, 很多医疗部门都存在操作不规范的问题。分析具体原因, 笔者归结为以下几点, 首先, 院方对注射剂检验该项工作的态度不端正, 具体表现为, 在抽样调查时, 不按照随机抽样的原则进行, 而是从方便操作的角度考虑, 这在很大程度上掩盖了问题的发生。再者, 在进行注射剂检验时, 工作人员对工作环境没有进行严格的消毒处理, 从检验人员自身的着装上就可以看出。再者由于部分单位工作人员的缺乏, 往往抽出医院的一些实习生来做这项工作, 而他们由于自身经验的缺乏, 在操作上难免有很多不当。要想遏制这样不良风气, 首先要从最根本的做起, 对工作人员严格要求, 端正自身的态度。再者从日常检验工作的细节抓起, 在进行生物制药注射剂检验的基本操作时, 应该注意以下几点:第一, 要注意仪器操作的正确性。检验仪器的正确使用是保障检验过程顺利进行的基本要求。第二, 注意基本操作的安全性, 不同的注射剂检验方法上稍有不同, 不能一概而论。因此在具体操作前要对主要检验的注射剂进行翔实的了解, 这样才能在提高工作效率的同时, 保证工作的严谨性、科学性。第三, 保证操作过程的质量与完整性, 在具体的检验过程中要有条不紊的进行, 保证每一项检验步骤的质量, 保证每一位工作人员都严格按照国家安全检验标准进行。

2.2 进行适当处理

在保证操作规范的基础上, 我们还在检验过程中做适当的处理。首先针对注射剂的取样量问题, 我们只要对于不同类别的注射剂, 应该抽取不同的样品量进行检验, 而要做到这一点, 需要对每种检验试剂都做到详细的了解, 如果在生物制药注射剂的检验之前没有很好地了解各类药品的性质, 就直接进行工作, 后果将不堪设想。再者要减少样品的浪费, 在检验之前制定详细的检验方案, 尽可能的减少注射剂的浪费, 尤其是一些生物制剂, 尽管是很微量的一些, 仍是十分珍贵的。最后还要做好检验后的处理工作, 对工作场所要进行严格的消毒处理, 避免注射剂对环境产生潜在性的不良影响。

3 注射剂的基本检验方法

3.1 薄膜过滤法

薄膜过滤法检验注射剂的安全性是医学上比较成熟的一项检验方法。在薄膜过滤法中, 笔者认为应该控制好两个问题:第一控制好注射剂的加入量, 防治过多对薄膜造成的堵塞, 过少则会影响药剂的检验效果。[3]第二是控制好薄膜过滤的时间, 对于一般性注射剂, 温度培养为40d左右, 当然具体药剂还要参照说明书适当调整。

3.2 活菌接种法

除了上述提到的薄膜过滤法之外, 活菌接种法也被认为是一宗较为实用的方法。注射剂的直接接种的检验方法是取符合相关规定的培养基进行直接接种的检验方法。在具体操作中除了考虑接种量和培养时间之外, 还要在培养过程中实时监测菌株的生长状况, 通过菌株生长状况的反应来判断注射剂的安全性, 当然该项试验中还需设置对照组, 以增强实验操作的科学性。

3.3 动物实验法

采用动物实验法是更具有可靠性的检验方法, 因为动物 (如小鼠) 无论是从生理构造还是各器官系统的功能上来看, 都与人类具有很大的相似性。因此笔者认为采用动物实验法是医学上的一个进步。动物实验法要控制好注射剂注射的时间周期和注射量, 在此基础上也要进行实时监测。

摘要：注射剂的基本检验方法包括薄膜过滤法、活菌接种法和动物实验法。注射剂的检验要严格按照国家安全检验标准进行, 注意仪器操作的正确性, 注意基本操作的安全性, 保证操作过程的质量与完整性, 保证医学检验的严谨性和科学性。

关键词：注射剂,检验方法,检验标准

参考文献

[1]张翠翠, 段久文.生物制药注射剂检验方法的探究与建议[J].黑龙江科学, 2013, (11) :215.